Skip to main content

Laboratorium badań biologicznych

W zakresie zainteresowań Laboratorium Badań Biologicznych znajdują się:

- Biologiczna ocena materiałów

- Wytwarzanie i modyfikacja materiałów metodami biofizycznymi, biochemicznymi, biotechnologicznymi i elektrochemicznymi

- Metaboliczna odpowiedź komórek, tkanek i organizmów wielokomórkowych na kontakt z materiałami

- Organizmy modelowe jako indykatory zagrożeń ze strony produktów innowacyjnych technologii

- Mechanizmy powstawania i metody zwalczania biofilmów mikrobiologicznych

- Biofizyka i fizjologia układu krzepnięcia

- Projektowanie i wytwarzanie zindywidualizowanych implantów medycznych i weterynaryjnych,

W pracowni hodowli komórkowej standardowo wykorzystujemy:

 Komórki pierwotne:

 1. Komórki kostne - osteoblasty - Human Osteoblasts-femoral
 2. Komórki chrzęstne - chondrocyty - Human Chondrocytes-articular

3. Fibroblasty skóry ludzkiej - Primary Dermal Fibroblast

Unieśmiertelnione linie komórkowe:

                 1. Komórki kostne - osteoblasty - Saos­2

                 2. Komórki chrzęstne - chondrocyty - SW 1353

                 3. Komórki śródbłonka - EA.hy926

 W pracowni mikrobiologicznej standardowo wykorzystujemy:
                Bakterie               Escherichia coli (pałeczka okrężnicy)
                                               Streptococcus mutans (paciorkowce)
                Grzyby                 Saccharomyces cerevisiae (drożdże piekarnicze)
                                               Candida albicans (bielnik biały)

 Modelowe organizmy wielokomórkowe:                                                                      

                Nicienie               Caenorhabditis elegans

 

Do analizy odziaływania materiałów z krwią wykorzystujemy testy:

  • Adhezji płytek krwi do badanej powierzchni
  • Oceny poziomu aktywacji płytek krwi zaadherowanych do powierzchni
  • Agregacji płytek w pełnej krwi cytrynianowej po kontakcie z badaną powierzchnią
  • Aktywacji płytek w pełnej krwi cytrynianowej wywołana kontaktem z badaną powierzchnią
  • Oceny stopnia hemolizy krwi po kontakcie z materiałami

 Dostępna aparatura i zakres jej wykorzystywania:

 Hodowla komórkowa: wyciąg laminarny, inkubator z regulacją wilgotności, stężenia CO2 i temperatury, licznik komórek

Pracownia mikrobiologiczna:  wyciąg laminarny, inkubator

Hodowla nicieni: inkubator z regulowaną temperaturą uzbrojony w kamerę CCD do rejestracji obrazów z prowadzonej hodowli

Mikroskop fluorescencyjny: Olympus GX71 wyposażony w kamerę cyfrową DC 90 stosowany do obserwacji komórek, tkanek i organizmów modelowych oraz oceny cytotoksyczności, adhezji płytek krwi, biofilmów mikrobiologicznych

Cytometr przepływowy: BD Accuri C6 służący do badania fluorescencyjnie znakowanych komórek w testach live/dead, potencjału proliferacji, apoptozy, naprawy uszkodzeń DNA, itp. 

Spektrofotometr UV-Vis:  NanoDrop 2000c służący do pełnej analizy  UV-VIS w mikroobjętościach (0,5-2 ml) w zakresie 190-840 nm z dokładnością do 1 nm

Spektrofotometr UV-VIS-NIR: Shimadzu UV-2600 dwuwiązkowy spektrofotometr do analizy widmowej w zakresie 185-1400 nm pracujący w trybie odbiciowym lub absorpcyjnym z możliwością badań kinetycznych

Czytnik mikropłytek: PerkinElmer Victor X z wielokanałowym iniektorem i opcją mieszania próbek po iniekcji, pomiar absorpcji światła w zakresie UV-Vis, pomiar intensywności fluorescencji mierzonej z góry oraz z dołu, pomiar intensywności luminescencji w trybie flash i glow, pomiar czasu zaniku fluorescencji (TRF). Czytnik umożliwia między innymi na odczyty testów ELISA (oznaczenie poziomu ekspresji receptorów, przeciwciał, antygenów, hormonów oraz aktywności wybranych enzymów i kinetyki reakcji).

Termocykler: BioRad CFX96 Touch Real-Time PCR służący do oceny zmian w ekspresji wybranych genów (transkryptomika)

System elektroforezy: GE 2D-DIGE IPG-Phor i Ettan Dalt Six do separacji i analizy białek i peptydów z wykorzystaniem elektroforezy żelowej - izoelektroogniskowanie (pierwszy kierunek) i SDS-PAGE (drugi kierunek) - oraz znakowania fluorescencyjnego (proteomika).

Skaner fluorescencyjny: GE Ettan DIGE Imager z oprogramowaniem do analizy obrazu Image Master – pozwala na skanowanie fluorescencyjnie znakowanych żeli i mikromacierzy (trzy różne fluorofory) i późniejszą separację fluorescencyjnie znakowanych próbek (proteomika)

Stanowisko do wytwarzania warstw metodą utleniania anodowego – zasilacz wysokonapięciowy EA-PS 9050-20 o parametrach 0-500V/DC, 0-20 A, 3000 W, kriostat z cyrkulacją zewnętrzną,   zakres temperatur -50˚C ÷ +100 ˚C